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主 旨:
預告訂定「食品微生物之檢驗方法-阪崎腸桿菌之檢驗」為食品衛生管理法所定之食品衛生檢驗方法草案,如附件。
依 據:
行政程序法第一百五十四條。
公告事項:
一、
訂定機關:行政院衛生署。
二、
訂定依據:食品衛生管理法第二十五條。
三、
草案內容如附件。本案另載於本署藥物食品檢驗局網站(網址:http://www.nlfd.
gov.tw),「本局公告」網頁。
四、
對於本公告內容有任何意見或修正建議,請於本公告刊登公報之日起14日內陳述意見或洽詢:
(一)
承辦單位:行政院衛生署藥物食品檢驗局
(二)
地址:台北市南港區昆陽街161-2號
(三)
電話:(02)26531252
(四)
傳真:(02)26531283
(五)
電子郵件:[email protected]
署 長 侯勝茂
本案依分層負責規定授權局長決行
食品微生物之檢驗方法-阪崎腸桿菌之檢驗草案
1
適用範圍:本方法適用於一般食品及奶粉中阪崎腸桿菌之檢驗。
2
檢驗方法:
2.1
工作環境:工作平台須寬敞、潔淨、光線良好,操作平台光度為100呎燭光以上,密閉室內換氣良好,儘可能沒有灰塵及流動空氣。每15分鐘落菌數不得超過15
CFU/培養皿。
2.2
器具及材料:
2.2.1 乾熱滅菌器。
2.2.2 高壓滅菌釜。
2.2.3 攪拌均質器(Blender)或鐵胃(Stomacher):適用於無菌操作者。
2.2.4 天平:可稱量到2000
g者,靈敏度為0.1 g;可稱量到120 g者,靈敏度為1 mg。
2.2.5 冰箱:能維持5
± 3℃者。
2.2.6 吸管或吸管尖:已滅菌,1
mL吸管應有0.01
mL之刻度;5 mL及10 mL吸管應有0.1
mL之刻度。
2.2.7 吸管輔助器(Pipette
aid)或微量分注器。
2.2.8 稀釋瓶:160
mL,玻璃、聚乙烯(polyethylene)、鐵弗龍(Teflon)或其他能耐121℃濕熱滅菌20分鐘以上之塑膠材質,附螺旋蓋。
2.2.9 培養皿:已滅菌,內徑約9
cm,深度約15
mm,底皿之內外面應平坦,無氣泡、刮傷或其他缺點。
2.2.10
增菌用容器:附螺旋蓋之125
mL、250
mL、2
L三角錐瓶或廣口瓶;玻璃、聚乙烯、鐵弗龍或其他能耐121℃濕熱滅菌20分鐘以上之塑膠材質。
2.2.11
pH測定儀。
2.2.12
培養箱:能維持內部溫度在
±
1℃以內者。
2.2.13
溫度計:量測溫度範圍1∼55℃,最小刻度0.1℃。
2.2.14
水浴:加蓋,具水流循環系統,能維持水溫溫差在
±
0.2℃以內者。
2.2.15
接種針及接種環(直徑約3
mm):鎳鉻合金、鉑銥或鉻線材質,或可拋棄式者。
2.2.16
曲玻棒:可滅菌者,直徑3∼4
mm,塗抹區域45∼55 mm。
2.2.17
試管:10
×
100 mm,13 ×
100 mm,13
×
120 mm,15 ×
150 mm,16
×
150 mm試管,或其他適用者。
2.2.18
顯微鏡:能放大至1000倍以上之一般光學顯微鏡。
2.2.19
載玻片及蓋玻片:適用於染色及鏡檢用。
2.2.20
研缽、杵。
2.2.21
藥勺、剪刀、小刀、鑷子:可滅菌。
2.2.22
濾紙及褐色試藥瓶。
2.2.23
無菌濾膜:孔徑0.45
μm或以下之親水性醋酸纖維膜。
2.2.24
杜蘭發酵管(Durham
fermentation tube):外徑9
×
22 mm或其他適用者。
2.2.25
試藥:氯化鈉、硫酸月桂酸鈉(sodium
lauryl sulfate)、膽鹽No.
3(bile
salts No. 3)、中性紅(neutral
red)、結晶紫(crystal
violet)、檸檬酸鐵銨(ferric
ammonium citrate)、去氧膽酸鈉(sodium
desoxycholate)、硫代硫酸鈉(sodium
thiosulfate)、草酸銨(ammonium
oxalate)、碘化鉀、碘、沙黃O(safranin
O)、對-二甲胺基苯甲醛(p-dimethyl
aminobenzaldehyde)、四甲基對位苯二胺鹽酸鹽(N,N,N',N'-tetramethyl
-ρ-phenylenediamine•2HCl)、磷酸二氫鈉(NaH2PO4•H2O)、硝基苯哌喃半乳糖苷(o-nitrophenyl-β-D-galactopyranoside,
ONPG)、5-溴-4-氯-3-吲哚-α-D-哌喃葡萄糖苷(5-bromo-4-chloro-3-indolyl-α-D-glucopyranoside)、亮綠(brilliant
green)、酚紅(phenol red)、溴甲酚紫(bromcresol
purple)、溴麝香草藍(bromthymol
blue)、肌酸(creatine)、甲基紅(methyl
red)、α-萘酚(α-naphthol)、氫氧化鉀、95%乙醇、無水乙醇、戊醇(amyl
alcohol)或異戊醇(isoamyl
alcohol)、乳糖、蔗糖、半乳糖醇(dulcitol)、核糖醇(adonitol)、棉子糖(raffinose)、山梨醇(sorbitol)、阿拉伯糖醇(D-arabitol)、氰化鉀、氫氧化鈉、L-離胺酸(L-lysine)、L-鳥胺酸(L-ornithine)、L-精胺酸(L-arginine)、礦物油或液態石蠟油(paraffin
oil)及鹽酸等均採用化學試藥級。
2.2.26
試劑:
2.2.26.1
無菌蒸餾水:
蒸餾水900
mL、90
mL、9
mL,分裝於增菌容器或試管中,以121℃滅菌15分鐘。
2.2.26.2
0.85%生理食鹽水:
取氯化鈉8.5
g溶於1000
mL蒸餾水中,分裝於試管內,以121℃滅菌15分鐘。
2.2.26.3
柯瓦克氏試劑(Kovacs’
reagent):
取對-二甲胺基苯甲醛5
g溶於戊醇或異戊醇75
mL中,再徐徐加入鹽酸25
mL,混合均勻後應呈黃色並須保存於4℃冰箱中。
2.2.26.4
甲基紅指示劑(Methyl
red indicator):
取甲基紅0.1
g溶於95%乙醇300
mL後,再加蒸餾水使成500
mL。
2.2.26.5
歐普氏試劑(Voges-Proskauer
test reagents, VP reagents):
溶液A:取α-萘酚5 g溶於無水乙醇100
mL中。
溶液B:取氫氧化鉀40
g溶於蒸餾水中,並使成100
mL。
2.2.26.6
0.5%氰化鉀溶液(0.5%potassium
cyanide solution):
取氰化鉀0.5
g溶於無菌蒸餾水100
mL中(氰化鉀為劇毒物質,本操作務必在抽氣櫃內進行)。
2.2.26.7
礦物油或液態石蠟油:
取礦物油或液態石蠟油20∼50
mL,裝入有蓋容器中約1/2滿,以121℃滅菌30分鐘。
2.2.26.8
革蘭氏染色液(Gram
stain solution):
2.2.26.8.1
哈克氏(Hucker’s)結晶紫液(初染劑):
溶液A:取結晶紫2
g溶於95%乙醇20
mL中。
溶液B:取草酸銨0.8
g溶於蒸餾水80 mL中。
將溶液A與溶液B混合,靜置24小時後以濾紙過濾,取濾液作為初染劑。
2.2.26.8.2
革蘭氏碘液(媒染劑):
取碘化鉀2
g及碘1
g置於研砵中,經研磨5∼10秒鐘後,加蒸餾水1
mL研磨,次加蒸餾水5
mL研磨,再加蒸餾水10
mL,研磨至碘化鉀和碘完全溶於水中,將此溶液注入褐色瓶中,再以適量蒸餾水洗滌研砵及杵後,併入洗液,加蒸餾水使成300
mL。
2.2.26.8.3
哈克氏複染液(複染劑):
取沙黃O
2.5 g溶於95%乙醇100
mL中,供作複染原液。使用時,取原液10
mL加蒸餾水90 mL,作為複染液。
註:
革蘭氏染色液因放久可能失效,因此若購買成品時,要注意其保存期限,若自行配製者應檢查其染色效果。
2.2.26.9
氧化酶試劑(Oxidase
reagent):
取四甲基對位苯二胺鹽酸鹽1
g溶於蒸餾水100
mL後,貯存於褐色瓶,並置入冰箱中,使用期限以不超過1星期為宜。
2.2.26.10
1 M磷酸二氫鈉溶液:
取磷酸二氫鈉6.9
g 溶於蒸餾水45
mL中,徐徐注入30%氫氧化鈉溶液約3
mL,調整pH值為7.0,續加入蒸餾水使成50
mL,貯存於4℃冰箱中備用。
2.2.26.11
硝基苯哌喃半乳糖試劑(ONPG
reagent):
取硝基苯哌喃半乳糖80
mg溶於37℃蒸餾水15
mL中,再加入1 M磷酸二氫鈉溶液5 mL,即為0.0133 M硝基苯哌喃半乳糖試劑,貯存於4℃冰箱中,使用時須加溫至37℃。
2.2.27
培養基:
2.2.27.1
蛋白腖緩衝液(Buffered
peptone water, BPW)
蛋白腖(peptone) 10
g
氯化鈉(NaCl)
5 g
磷酸氫二鈉(Na2HPO4)
3.5 g
磷酸二氫鉀(KH2PO4) 1.5
g
蒸餾水
1000
mL
攪拌加熱溶解後,以121℃滅菌15分鐘,最終pH值為7.2 ±
0.2。
2.2.27.2
加鹽硫酸月桂酸胰化蛋白
培養液(Lauryl
tryptose broth with 2% NaCl, 2% NaCl-LST)
胰化蛋白 (tryptose) 20
g
乳糖(lactose) 5
g
磷酸二氫鉀(KH2PO4) 2.75
g
磷酸氫二鉀(K2HPO4) 2.75
g
氯化鈉(NaCl)
20 g
硫酸月桂酸鈉(sodium
lauryl sulfate) 0.1
g
蒸餾水
1000
mL
加熱溶解後,分取10
mL注入裝有杜蘭發酵管之試管內,以121℃滅菌15分鐘,最終pH值為6.8 ±
0.2。
2.2.27.3
紫紅膽鹽葡萄糖培養基(Violet
red bile glucose agar, VRBG)
酵母抽出液(yeast extract)
3 g
蛋白腖(peptone) 7
g
氯化鈉(NaCl) 5
g
膽鹽No.
3(bile salts No. 3) 1.5
g
乳糖(lactose)
10 g
中性紅(neutral
red)
0.03 g
結晶紫(crystal
violet) 0.002
g
洋菜(agar) 15
g
葡萄糖(glucose) 10
g
蒸餾水
1000
mL
加熱至沸騰溶解,注意不可加熱過度。於45∼50℃水浴中冷卻,最終pH值為7.4 ±
0.2。每培養皿注入約20
mL,凝固後確定表面乾燥後使用。配製後之培養基應放置於2∼8℃冰箱中保存,但須於一個月內使用完畢。
2.2.27.4
阪崎腸桿菌培養基(Enterobacter
sakazakii agar, ESA)
胰化蛋白腖(tryptone) 15
g
大豆蛋白腖(soya
peptone) 5.0
g
氯化鈉(NaCl) 5.0
g
檸檬酸鐵銨(ferric
ammonium citrate) 1.0
g
去氧膽酸鈉(sodium
desoxycholate)
1.0
g
硫代硫酸鈉(Na2S2O3.5H2O) 1.0
g
5-溴-4-氯-3-吲哚-α-D-哌喃葡萄糖苷
(5-bromo-4-chloro-3-indolyl-α-D-glucopyranoside)
0.1 g
洋菜(agar)
15 g
蒸餾水
1000
mL
攪拌加熱溶解後,以121℃,滅菌15分鐘,最終pH值為7.3 ±
0.2。冷卻至50℃,每培養皿注入約20
mL,凝固後確定表面乾燥後使用。
2.2.27.5
腸內細菌科增菌培養液(Enterobacteriaceae
enrichment broth, EE broth)
蛋白腖(peptone)
10 g
葡萄糖(glucose)
5 g
磷酸氫二鈉(Na2HPO4)
8 g
磷酸二氫鉀(KH2PO4)
2 g
牛膽鹽(ox-gall)
20 g
亮綠(brilliant
green) 0.015
g
蒸餾水
1000
mL
加熱至沸騰溶解,注意不可加熱過度,最終pH值為7.2
± 0.2。取90
mL注入約125
mL已滅菌之附蓋三角錐瓶或廣口瓶中,配置後之培養液應放置於2∼8℃冰箱中保存,但一個月內使用完畢。
2.2.27.6
胰化酪蛋白大豆培養基(Trypticase
soy agar, TSA)
胰化酪蛋白腖(trypticase
peptone)
15.0 g
植物蛋白腖(phytone
peptone)
5.0
g
氯化鈉(NaCl)
5.0 g
洋菜(agar)
15
g
蒸餾水
1000
mL
平板培養基配製方法:攪拌加熱溶解後,以121℃滅菌15分鐘,最終pH值為7.3 ±
0.2。冷卻至50℃,每培養皿注入約20
mL,凝固後確定表面乾燥後使用;斜面培養基配製方法:加熱溶解後,分取約5
mL注入試管,以121℃滅菌15分鐘,最終pH值為7.3
± 0.2。滅菌後作成斜面培養基,斜面長度約4∼5
cm,斜面底部之深度約2∼3 cm。
2.2.27.7
尿素培養液(Urea
broth)
尿素(urea) 20
g
酵母抽出物(yeast
extract)
0.1
g
磷酸氫二鉀(K2HPO4) 9.1
g
磷酸氫二鈉(Na2HPO4)
9.5
g
酚紅(phenol
red) 0.01
g
蒸餾水 1000
mL
溶解後,經孔徑0.45
µm濾膜過濾後,分取1.5∼3
mL濾液,注入已滅菌之試管中,最終pH值為6.8 ±
0.2。
2.2.27.8
運動性試驗培養基(Motility
test medium)
牛肉抽出物(beef extract)
3 g
蛋白腖(peptone)
10 g
氯化鈉(NaCl) 5
g
洋菜(agar)
4 g
蒸餾水 1000
mL
加熱溶解後,分取約8
mL注入附有螺旋蓋試管中,以121℃滅菌15分鐘,最終pH值為7.4
± 0.2。
2.2.27.9
氰化鉀培養液(Potassium
cyanide broth)
聚蛋白腖(polypeptone)
3 g
氯化鈉(NaCl) 5
g
磷酸二氫鉀(KH2PO4) 0.225
g
磷酸氫二鈉(Na2HPO4) 5.64
g
蒸餾水 1000
mL
溶解後,以121℃滅菌15分鐘,最終pH值為7.6 ±
0.2。冷卻後於抽氣櫃內以吸管輔助器配合無菌操作,加入0.5%氰化鉀溶液15
mL,混合均勻,分取1∼1.5 mL注入已滅菌之試管中,貯存於冰箱備用,貯存期限不得超過兩週(操作氰化鉀溶液時,需戴手套且不可用口吸取)。
2.2.27.10
胰化蛋白腖培養液(Tryptone
broth)
胰化蛋白腖(tryptone)或
胰化酪蛋白腖(trypticase) 10
g
蒸餾水 1000
mL
溶解後,分取約5
mL注入試管內,以121℃滅菌15分鐘,最終pH值為6.9
± 0.2。
2.2.27.11
MR-VP培養液(MR-VP
broth)
蛋白腖緩衝液粉末(buffered
peptone-water powder) 7
g
葡萄糖(glucose)
5 g
磷酸氫二鉀(K2HPO4) 5
g
蒸餾水
1000 mL
溶解後,分取約10
mL注入試管中,以118∼121℃滅菌15分鐘,最終pH值為6.9
± 0.2。
2.2.27.12
溴甲酚紫培養液(Bromcresol
purple broth)
蛋白腖(peptone)
10 g
牛肉抽出物(beef
extract)
3 g
氯化鈉(NaCl)
5
g
溴甲酚紫(bromcresol
purple)
0.04 g
蒸餾水 1000
mL
溶解後,分取約2.5
mL注入試管內,以121℃滅菌10分鐘,最終pH值為7.0 ±
0.2。冷卻後,每管加入經0.2
μm孔徑濾膜過濾除菌之50%(w/v)蔗糖溶液0.278
±
0.002 mL,使培養液中該糖之最終濃度為5%(w/v)。含半乳糖醇、核糖醇、棉子糖、山梨醇及阿拉伯糖醇之溴甲酚紫培養液配製方法亦同。
2.2.27.13
脫羧酶基礎培養液(Decarboxylase
basal medium)
蛋白腖(peptone) 5
g
酵母抽出物(yeast
extract)
3
g
葡萄糖(glucose)
1 g
溴甲酚紫(bromcresol
purple)
0.02 g
蒸餾水
1000 mL
加熱攪拌溶解後,取L-離胺酸
5 g溶解於上述之培養液中,混合均勻,分取適量注入試管內,以121℃滅菌10分鐘,最終pH值為6.5
± 0.2,使成離胺酸脫羧酶培養液。含L-精胺酸及L-鳥胺酸之脫羧酶培養液配製方法亦同。對照組之配製,除脫羧酶基礎培養液外,不需添加任何物質。
2.2.27.14
辛蒙斯檸檬酸鹽培養基(Simmons
citrate agar)
氯化鈉(NaCl)
5 g
檸檬酸鈉(Na3C6H5O7)
2 g
磷酸氫二鉀(K2HPO4)
1 g
磷酸二氫銨(NH4H2PO4)
1 g
硫酸鎂(MgSO4)
0.2 g
溴麝香草藍(bromthymol
blue)
0.08 g
洋菜(agar) 15
g
蒸餾水 1000
mL
加熱溶解後,分取約5
mL注入試管中,以121℃滅菌15分鐘,最終pH值為6.8
± 0.2。滅菌後作成斜面培養基,此斜面長度約4∼5
cm,斜面底部深度約2∼3 cm。
2.3
檢液之調製:
2.3.1 奶粉檢體(包括嬰兒配方奶粉、特殊營養配方奶粉、幼童專用奶粉及成人奶粉):用振搖方式,使充分均勻混合後,以已滅菌之藥勺或其他方便使用之用具,取100
g、10
g及1
g,分別加入內含預熱至45℃之無菌蒸餾水900
mL、90 mL及9
mL之2
L、250 mL及125 mL三角錐瓶中(三重複)。以上三角錐瓶得以其他耐濕熱滅菌之塑膠材質容器或玻璃試管替代,唯檢液體積以不超過容器總容量二分之一為原則。充分混合均勻,即為三階三瓶(管)之10倍稀釋檢液,於35℃培養18∼24小時,供作檢液。因檢液於增菌培養過程可能產氣,故不可緊鎖螺旋瓶蓋(或試管蓋),宜維持鬆動但不脫落狀態。
2.3.2 液態食品檢體:充分均勻混合後,取100
mL、10
mL及1
mL,分別加入內含900
mL、90 mL及9
mL已滅菌之蛋白腖緩衝液。充分混合均勻,即為三階三瓶(管)之10倍稀釋檢液,於35℃培養18∼24小時,供作檢液。
2.3.3 環境檢體或塗抹物檢體:
2.3.3.1
環境檢體:取1
g置於含2%
NaCl-LST培養液10 mL之試管內,於44℃培養18∼24小時,供作檢液。
2.3.3.2
塗抺物檢體:將塗抹棒之頭部置於已滅菌試管內,以無菌操作折(剪)斷塗抹物木柄,添加蛋白腖緩衝液5
mL後,將試管蓋旋緊,於10秒內來回叩擊手心使其劇烈振盪(振盪幅度需達15公分)50次,或以旋渦混合器充分振盪至塗抹物頭部之棉絮鬆開。取溶出液1
mL置於含2%
NaCl-LST培養液10 mL之試管內,於44℃培養18∼24小時,供作檢液。
或將塗抹棒之頭部置於含2%
NaCl-LST培養液10
mL之試管內,以無菌操作折(剪)斷塗抹物木柄,於44℃培養18∼24小時,供作檢液。
2.4
鑑別試驗:
2.4.1 選擇性增菌培養:吸取2.3節之檢液10 mL,加入內盛有腸內細菌科增菌培養液90
mL之160 mL稀釋瓶中。混合均勻後於35℃培養18∼24小時。
2.4.2 分離培養:
2.4.2.1
方法一:自2.4.1節之腸內細菌科增菌培養液中取一接種環量,在VRBG及ESA培養基表面劃線後(二重複),於35℃培養18∼24小時,觀察所形成菌落之形態。阪崎腸桿菌在VRBG培養基上的典型菌落為外緣規則平整,呈淡粉紅色或紫紅色,外緣通常伴有紫紅色之膽酸(bile
acids)類物質沉殿環生成;阪崎腸桿菌在ESA培養基上的典型菌落為外緣規則平整,呈綠色。自VRBG及ESA培養基上鉤取可疑菌落,劃線於TSA平板培養基,於35℃培養18∼24小時後,進行下列初步生化試驗。
2.4.2.2
方法二:自2.4.1節之腸內細菌科增菌培養液中吸取1
mL量,加入內盛有生理食鹽水9
mL之試管中,進行系列稀釋,使增菌培養液稀釋至原來的10-4∼10-6倍。每一管(含未稀釋之培養液)分別以無菌吸管吸取0.1
mL量,以曲玻棒均勻塗於VRBG及ESA培養基上,於35℃培養18∼24小時。自VRBG及ESA培養基上鉤取可疑菌落,劃線於TSA平板培養基,於35℃培養18∼24小時後,進行下列初步生化試驗。
2.4.3 混合菌株(Mixed
culture)之純化:將VRBG及ESA培養基上之未純化菌株,以四區劃法,劃於VRBG或ESA培養基,於35℃培養18∼24小時後,鉤取典型菌落,劃線於TSA平板培養基,於35℃培養18∼24小時後,進行下列初步生化試驗。
2.5
鑑定試驗:
2.5.1 初步生化試驗:
2.5.1.1
氧化酶試驗(Oxidase
test):以無菌接種針挑取可疑菌株,塗抹於含有氧化酶試劑之濾紙表面。10∼15秒後變為深紫色者為正反應,否則為負反應,阪崎腸桿菌為氧化酶負反應。
2.5.1.2
黃色色素產生試驗(Yellow
pigment production test):以無菌接種針挑取TSA平板培養基上可疑菌株至少5株,分別劃於TSA斜面培養基上,以25℃培養48∼72小時,觀察菌株產生色素之情形。有黃色色素產生者為正反應,否則為負反應,阪崎腸桿菌為正反應。
2.5.1.3
尿素酶試驗(Urease
test):以無菌接種針挑取可疑菌株,接種於尿素培養液內,於35℃培養24
± 2小時。由於未接種之尿素培養液偶爾會轉變為紫紅色,故試驗時應包括未接種之培養液作為對照用。培養液由橘紅色轉變為紫紅色者為正反應,顏色不變者為負反應,阪崎腸桿菌為負反應。
2.5.1.4
運動性試驗(Motility
test):以無菌接種針挑取可疑菌株,穿刺接種於運動性試驗培養基之表面中央點至深度0.5吋處。於35℃培養24小時後開始觀察直至48
±
2小時。當測試菌沿穿刺線呈放射線狀生長者為正反應,否則為負反應,阪崎腸桿菌為正反應。
2.5.1.5
革蘭氏染色(Gram
stain):以無菌接種針挑取可疑菌株,劃於TSA斜面培養基上,於35℃培養24 ±
2小時,依下列步驟進行革蘭氏染色後鏡檢。
(1)
鉤取菌體,於載玻片上製成薄抹片,風乾或微熱固定。
(2)
初染:將已固定之抹片,用哈克氏結晶紫液染1分鐘後水洗,水洗時間應不超過5秒鐘。
(3)
媒染:加革蘭氏碘液作用1分鐘,水洗。
(4)
脫色:以95%乙醇洗至不再有紫色褪出時,再以水洗,此步驟需時甚短,僅數秒即可,惟視抹片之厚薄而定。
(5)
複染:用哈克氏複染液複染30秒鐘,水洗。
(6)
自然風乾。
(7)
鏡檢:呈現深紫色者為革蘭氏陽性菌,呈現淡紅色者為革蘭氏陰性菌。阪崎腸桿菌為革蘭氏陰性、無莢膜、無芽孢之桿狀菌。
經上述試驗,判定為可疑阪崎腸桿菌者,自TSA培養基鉤菌,進行下列生化試驗確認。
2.5.2 生化試驗:
2.5.2.1
硝基苯哌喃半乳糖苷試驗(ONPG
test):鉤菌並置於含有已滅菌之0.85%生理食鹽水0.2
mL之試管中,作成濃懸浮液後,再加入一片浸過硝基苯哌喃半乳糖苷試劑之紙錠,並輕輕搖動後,於35℃培養6∼24小時,紙錠變成黃色者為正反應,否則為負反應,阪崎腸桿菌為正反應。
2.5.2.2
氰化鉀試驗(KCN
test):鉤菌接種於氰化鉀培養液,以橡皮塞塞緊試管口,於35℃培養24小時後開始觀察直至48
± 2小時。培養液由清澈變為混濁者為正反應,否則為負反應,阪崎腸桿菌為正反應。
2.5.2.3
吲哚試驗(Indole
test):鉤菌接種於胰化蛋白腖培養液中,於35℃培養48
± 2小時後,加入柯瓦克氏試劑0.2∼0.3 mL,輕輕搖動後靜置約10分鐘,上層呈紅色者為正反應,否則為負反應,大部份阪崎腸桿菌為負反應。
2.5.2.4
歐普氏試驗(VP
test):鉤菌接種於MR-VP培養液中,於35℃培養48
± 2小時後,取培養液1
mL至另一已滅菌之試管中,加入歐普氏試劑溶液A約0.6
mL及歐普氏試劑溶液B約0.2 mL後,再加入少許肌酸,振搖均勻,經2∼4小時後觀察結果,呈現粉紅色至鮮紅者為正反應,否則為負反應,大部份阪崎腸桿菌為正反應。
2.5.2.5
甲基紅試驗(Methyl
red test):將2.5.2.4節剩餘之MR-VP培養液於35℃再培養48
± 2小時後,取培養液5
mL至另一已滅菌試管中,加入甲基紅指示劑5∼6滴,輕輕搖勻,呈紅色者為正反應,否則為負反應,大部份阪崎腸桿菌為負反應。
2.5.2.6
檸檬酸鹽利用試驗(Citrate
utilization test):鉤菌接種於辛蒙斯檸檬酸鹽斜面培養基,須在斜面上作劃線及穿刺培養,於35℃培養96
± 2小時。斜面上有菌體生長且培養基顏色由綠色變為藍色者為正反應,否則為負反應,阪崎腸桿菌為正反應。
2.5.2.7
精胺酸二水解酶試驗(Arginine
dihydrolase test):鉤菌分別接種於精胺酸脫羧酶培養液及脫羧酶基礎培養液中,接種後分別注入已滅菌之液態石蠟或礦物油覆蓋表面高約1∼2
cm,需鬆蓋,於35℃培養4天,每24小時觀察一次。精胺酸脫羧酶培養液呈紫色,且脫羧酶基礎培養液呈黃色者為正反應,否則為負反應,阪崎腸桿菌為精胺酸二水解酶正反應。
2.5.2.8
離胺酸脫羧酶試驗(Lysine
decarboxylase test):鉤菌分別接種於離胺酸脫羧酶培養液及脫羧酶基礎培養液中,接種後注入已滅菌之液態石蠟或礦物油覆蓋表面高約1∼2
cm,需鬆蓋,於35℃培養4天,每24小時觀察一次。離胺酸脫羧酶培養液呈紫色且脫羧酶基礎培養基呈黃色者為正反應,否則為負反應,阪崎腸桿菌為負反應。
2.5.2.9
鳥胺酸脫羧酶試驗(Ornithine
decarboxylase test):鉤菌分別接種於鳥胺酸脫羧酶培養液及脫羧酶基礎培養液中,接種後注入已滅菌之液態石蠟或礦物油覆蓋表面高約1∼2
cm,需鬆蓋,於35℃培養4天,每24小時觀察一次。鳥胺酸脫羧酶培養液呈紫色,且脫羧酶基礎培養液呈黃色者為正反應,否則為負反應,阪崎腸桿菌為正反應。
2.5.2.10
發酵試驗(Fermentation
test):鉤菌接種於分別含有蔗糖、半乳糖醇、核糖醇、棉子糖、山梨醇及阿拉伯糖醇等糖類之溴甲酚紫培養液中,於35℃培養2∼5天,每隔24小時觀察其發酵情形。培養液顏色由紫色轉變為黃色,產酸者為正反應。
2.6
判定:阪崎腸桿菌陽性者,應符合表一及表二所列之結果。
表一、E. sakazakii、E. cloacae、E. aerogenes、E. agglomerans及E. gergoviae之生化反應(1)
|
試驗項目
|
E.
sakazakii
|
E. cloacae
|
E. aerogenes
|
E
.agglomerans
|
E. gergoviae
|
|
離胺酸脫羧酶
(lysine
decarboxylase)
|
-
|
-
|
+
|
-
|
+
|
|
精胺酸二水解酶
(arginine
dihydrolase)
|
+
|
+
|
-
|
-
|
-
|
|
鳥胺酸脫羧酶
(ornithine
decarboxylase)
|
+
|
+
|
+
|
-
|
+
|
|
檸檬酸鹽利用
(citrate
utilization)
|
+
|
+
|
+
|
[+]
|
+
|
|
尿素酶(urease)
|
-
|
-
|
-
|
-
|
+
|
|
吲哚(indole)
|
d
|
-
|
-
|
d
|
-
|
|
氰化鉀(KCN)
|
+
|
+
|
+
|
d
|
-
|
|
黃色色素產生
(yellow
pigment production)
|
+
|
-
|
-
|
d
|
-
|
|
甲基紅(MR)
|
-
|
d
|
ND
|
ND
|
-
|
|
歐普氏(VP)
|
+
|
d
|
ND
|
ND
|
+
|
(1)
+表示所有菌株在1∼2天內為正反應;[+]表示大部分(89%以上)在1∼4天內為正反應;d表示依菌株而異(通常11∼80%為正反應);- 表示所有菌株培養7天後皆為負反應;ND無可引用之資料。
表二、E. sakazakii、E. cloacae、E.
aerogenes、E.
agglomerans及E. gergoviae之發酵試驗(1)
|
試驗項目
|
E.
sakazakii
|
E. cloacae
|
E. aerogenes
|
E. agglomerans
|
E. gergoviae
|
|
蔗糖
(sucrose)
|
+
|
+
|
+
|
(+)
|
+
|
|
半乳糖醇 (dulcitol)
|
-
|
(-)
|
-
|
(-)
|
-
|
|
核糖醇
(adonitol)
|
-
|
(-)
|
+
|
-
|
-
|
|
棉子糖(raffinose)
|
+
|
+
|
+
|
V
|
+
|
|
山梨醇
(sorbitol)
|
-
|
+
|
+
|
V
|
-
|
|
阿拉伯糖醇
(D-arabitol)
|
-
|
(-)
|
+
|
-
|
+
|
(1)
+表示90∼100%為正反應;(+)表示75∼89%為正反應;V表示25∼74%為正反應;(-)表示10∼24%為正反應;-表示0∼9%為正反應。
2.7
最確數計算:由2.6節判定為阪崎腸桿菌陽性者之各階瓶(管)數,利用接種量為每瓶(管)0.1, 0.01, 0.001(g或mL)之三階三瓶(管)最確數表(如附表),推算出阪崎腸桿菌之最確數(MPN/g或MPN/mL)。
附表:最確數表
|
正反應試瓶(管)數
[每瓶(管)之接種量g或mL]
|
MPN/
mL(g)
|
95%
信賴界限
|
正反應試瓶(管)數
[每瓶(管)之接種量g或mL]
|
MPN/
mL(g)
|
95%
信賴界限
|
|
0.1
|
0.01
|
0.001
|
下限
|
上限
|
0.1
|
0.01
|
0.001
|
下限
|
上限
|
|
0
|
0
|
0
|
<
3.0
|
--
|
9.5
|
2
|
2
|
0
|
21
|
4.5
|
42
|
|
0
|
0
|
1
|
3.0
|
0.15
|
9.6
|
2
|
2
|
1
|
28
|
8.7
|
94
|
|
0
|
1
|
0
|
3.0
|
0.15
|
11
|
2
|
2
|
2
|
35
|
8.7
|
94
|
|
0
|
1
|
1
|
6.1
|
1.2
|
18
|
2
|
3
|
0
|
29
|
8.7
|
94
|
|
0
|
2
|
0
|
6.2
|
1.2
|
18
|
2
|
3
|
1
|
36
|
8.7
|
94
|
|
0
|
3
|
0
|
9.4
|
3.6
|
38
|
3
|
0
|
0
|
23
|
4.6
|
94
|
|
1
|
0
|
0
|
3.6
|
0.17
|
18
|
3
|
0
|
1
|
38
|
8.7
|
110
|
|
1
|
0
|
1
|
7.2
|
1.3
|
18
|
3
|
0
|
2
|
64
|
17
|
180
|
|
1
|
0
|
2
|
11
|
3.6
|
38
|
3
|
1
|
0
|
43
|
9
|
180
|
|
1
|
1
|
0
|
7.4
|
1.3
|
20
|
3
|
1
|
1
|
75
|
17
|
200
|
|
1
|
1
|
1
|
11
|
3.6
|
38
|
3
|
1
|
2
|
120
|
37
|
420
|
|
1
|
2
|
0
|
11
|
3.6
|
42
|
3
|
1
|
3
|
160
|
40
|
420
|
|
1
|
2
|
1
|
15
|
4.5
|
42
|
3
|
2
|
0
|
93
|
18
|
420
|
|
1
|
3
|
0
|
16
|
4.5
|
42
|
3
|
2
|
1
|
150
|
37
|
420
|
|
2
|
0
|
0
|
9.2
|
1.4
|
38
|
3
|
2
|
2
|
210
|
40
|
430
|
|
2
|
0
|
1
|
14
|
3.6
|
42
|
3
|
2
|
3
|
290
|
90
|
1000
|
|
2
|
0
|
2
|
20
|
4.5
|
42
|
3
|
3
|
0
|
240
|
42
|
1000
|
|
2
|
1
|
0
|
15
|
3.7
|
42
|
3
|
3
|
1
|
460
|
90
|
2000
|
|
2
|
1
|
1
|
20
|
4.5
|
42
|
3
|
3
|
2
|
1100
|
180
|
4100
|
|
2
|
1
|
2
|
27
|
8.7
|
94
|
3
|
3
|
3
|
>1100
|
420
|
--
|
說明:
經腸內細菌科增菌培養液增菌培養,劃線至VRBG及ESA培養基,並挑選可疑菌落進行鑑定試驗,確認含有阪崎腸桿菌之試瓶(管)數若為3-3-2,對照MPN數為1100,則:
(1)
若接種量為每瓶(管)含檢體0.1,0.01,0.001(g或mL),則該檢體阪崎腸桿菌之最確數為1100(MPN/g或MPN/mL)。
(2)
若接種量為每瓶(管)含檢體100,10,1(g或mL),則該檢體阪崎腸桿菌之最確數應為1100÷1000=1.1(MPN/g或MPN/mL)。
2.8
參考使用經確效認可之市售培養基、生化檢測套組或生化試驗鑑定系統,惟檢驗結果有爭議時,應以傳統方法為準。
|